Научный архив: статьи

Введение. Бактериальные сообщества существенно влияют на общую производительность сельскохозяйственных предприятий, от них зависит здоровье животных, производство молока, качество и безопасность пищевых продуктов. Зоонозные бактерии не только оказывают негативное воздействие на благополучие животных, но и представляют риск для общественного здравоохранения, поэтому мониторинг видового разнообразия микроорганизмов на молочных фермах для определения преобладающих видов возбудителей и профилей антибиотикорезистентности имеет важное значение.

Цель исследования. Изучение видового разнообразия бактериальных сообществ на молочной ферме и мониторинг распространения антибиотикорезистентности у изолятов Escherichia coli и Proteus mirabilis для своевременной разработки мер по сдерживанию распространения устойчивых к антибактериальным препаратам микроорганизмов.

Материалы и методы. Для достижения поставленной цели проводили идентификацию микроорганизмов методом MALDI-ToF масс-спектрометрии и определяли антибиотикочувствительность выделенных культур с помощью диско-диффузионного метода.

Результаты. Установлено видовое разнообразие микроорганизмов, выделенных из проб экссудата c поверхности ран конечностей крупного рогатого скота, фекалий и образцов корма. Преобладающими микроорганизмами оказались оппортунистические и патогенные Escherichia coli и Proteus mirabilis, для них определены профили антибиотикорезистентности. Один из изолятов Escherichia coli был мультирезистентным, только комбинация амоксициллина и клавулановой кислоты проявила эффективность в подавлении роста данной культуры. Большая доля изолятов Proteus mirabilis обладала устойчивостью к препаратам из группы фторхинолонов и чувствительностью ко всем остальным исследованным антибактериальным средствам.

Заключение. Отмечены факторы, влияющие на видовое разнообразие микроорганизмов в раневом экссудате, фекалиях и кормах. Определение профилей антибиотикорезистентности энтеробактерий позволит провести ротацию антибактериальных препаратов в исследованных животноводческих организациях.

Стрептококк группы B (Streptococcus agalactiae, CГВ) остается основной причиной неонатального сепсиса и менингита, несмотря на выраженное снижение из-за применения интранатальной антибиотикопрофилактики. Вместе с тем, задержки в выявлении и лечении неонатальных инфекций могут вызвать серьезные последствия и в некоторых случаях смерть новорожденного, с другой стороны, ненужное применение антибиотиков также имеет пагубные последствия (изменение нормальной микробиоты новорожденного, развитие устойчивости к противомикробным препаратам и др). При этом перед лабораториями постоянно встает задача совершенствовать диагностические подходы для быстрой и правильной идентификации новорожденных с инфекцией.

Цель исследования. Проанализировать эффективность, результативность и время выдачи результатов бактериологического исследования при неонатальном сепсисе и менингите, вызванного Streptococcus agalactiae, для определения лучшей диагностической стратегии.

Материал и методы. В период с января по ноябрь 2024 г. проанализированы истории болезни 10 новорожденных с положительной гемокультурой на Streptococcus agalactiae. Образцы крови были взяты в асептических условиях в педиатрические флаконы для гемокультивирования по стандартному протоколу. Идентификацию микроорганизмов производили 2 методами: 1 — путем стандартного субкультивировании на чашках с питательной средой и 2 — напрямую из положительных флаконов с применением технологии MALDI-TOF MS на анализаторе Vitek MS (BioMerieux, Франция) с использовани- ем in-house метода.

Результаты. Среднее время от момента взятия пробы до постановки в прибор для гемокультивирования (А) составило 13,1±7,4 ч, среднее время роста микроорганизма, т.е. до положительного сигнала (В) — 6,7±3,0, среднее время идентификации возбудителя из флакона крови (С) — 20,2±13,1, среднее время оборота пробы в лаборатории (от забора материала до выдачи результата идентификации клиническому врачу — D) соcтавило 42,0±12,0 ч. При использовании метода ускоренной идентификации напрямую из положительного флакона среднее время С составило 12,5 часов, D — 36,3 часа.

Выводы. Применение ускоренной методики культурального выявления СГВ в гемокультурах новорожденных детей позволило сократить время идентификации возбудителя в положительной культуре крови на 17,5 часов с 30 часов до 12,5 (более чем в 2 раза), а общее время от получения биоматериала до принятия решения лечащим — сократить на 14 часов (с 50 часов до 36), т. е. почти в 1,5 раза.