Доклиническую оценку специфической активности инфузионных растворов проводят на крупных лабораторных животных, использование которых в скрининговых исследованиях затруднено в связи с большими материальными и временными затратами. В настоящее время коллективом авторов (Шперлинг И. А. и др.) разработана модель острой кровопотери на крысах, в которой критериями специфической активности инфузионных растворов рассматриваются расчетные показатели: приведенный ударный объем крови (ПУдОК) и показатель эффективности инфузии (ПЭИ). Данные показатели рассматриваются в качестве косвенных аналогов ударного объема сердца — основного показателя функции сердечной деятельности. Динамика данных показателей позволяет комплексно оценить эффективность механизмов поддержания гемодинамики при острой кровопотере и ее восполнении в скрининговых исследованиях на мелких лабораторных животных. В связи с этим проведено исследование с целью определения возможности использования приведенного ударного объема крови и показателя эффективности инфузии в качестве критериев оценки специфической активности инфузионных растворов на модели острой кровопотери у крупных лабораторных животных. Содержание животных и все манипуляции с ними одобрены локальным этическим комитетом. У наркотизированных (внутримышечно золетил 100; ингаляционно изофлуран) самцов свиней (массой около 50 кг) проводили эксфузию крови через яремную вену в объеме 45–50% объема циркулирующей крови (ОЦК) (исходя из ОЦК, равного 7% массы животного) со скоростью 50 мл/мин до установления стойкой артериальной гипотензии. Далее животные были распределены на 2 группы по 10 особей: контрольную (без инфузии) и опытную (восполнение ОЦК реополиглюкином, который вводили в яремную вену через 15 мин после окончания эксфузии крови). В динамике эксперимента регистрировали частоту сердечных сокращений (ЧСС) и среднее артериальное давление (АДср), проводили ЭхоКГ, измерение ударного объема (УО) крови, рассчитывали ПУдОК и ПЭИ. Статистический анализ полученных данных выполняли с помощью программного обеспечения Statistica 10.0. Сравнительный анализ позволил установить тесную корреляционную связь между исследуемыми показателями гемодинамики (ПУдОК и ПЭИ) и УО, измеренным с помощью ЭхоКГ. На основе полученных результатов дополнительно разработаны прогностические признаки благоприятного и неблагоприятного течения периода острой кровопотери. Рассмотренные в настоящем исследовании расчетные показатели (ПУдОК и ПЭИ) являются корректными индексами, отражающими гемодинамику при острой кровопотере и эффективность ее компенсации вливанием инфузионных растворов. Данные показатели не требуют фактического подтверждения УО крови, являющегося одним из ключевых показателей эффективности деятельности сердца, и могут быть использованы в экспериментах по оценке специфической активности инфузионных растворов на модели острой кровопотери у крупных лабораторных животных, в частности, свиней.
Идентификаторы и классификаторы
Острая кровопотеря инициирует последовательное развитие реакций организма в виде уменьшения венозного возврата и сердечного выброса, снижения системного артериального давления, гипоперфузии тканей, метаболических нарушений, что приводит к дисфункции органов, полиорганной недостаточности и смерти [1–5].
Список литературы
1. Crandall C., Rickards C., Johnson B. Impact of environmental stressors on tolerance to hemorrhage in humans // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2019. Vol. 316. P. 88–100. DOI: 10.1152/ajpregu.00235. 2018.
2. Голубцов В.В., Рагимов А.А., Хватов В.Б. Периоперационная коррекция кровопотери. Руководство для врачей. Москва: ГЭОТАР-МЕДИА, 2023. 264 с. [Golubcov V.V., Ragimov A.A., Hvatov V.B. Perioperacionnaya korrekciya krovopoteri. Rukovodstvo dlya vrachej. Moskva: GEOTAR-MEDIA, 2023. 264 p. (In Russ.)].
3. Григорьев Е.В., Лебединский К.М., Щеголев А.В. и др. Реанимация и интенсивная терапия при острой массивной кровопотере у взрослых пациентов // Анестезиология и реаниматология. 2020. № 1. С. 5–24. [Grigor’ev E.V., Lebedinsky K.M., Schegolev A.V. et al. Reanimaciya i intensivnaya terapiya pri ostroj massivnoj krovopotere u vzroslykh pacientov // Anesteziologiya i reanimatologiya. 2020. N. 1. P. 5–24. (In Russ.)].
4. Курсов С.В., Никонов В.В., Скороплет С.Н. Кровопотеря // Медицина неотложных состояний. 2019. Т. 96. № 1. С. 7–21. [Kursov S.V., Nikonov V.V., Skoroplet S.N. Krovopoterya // Medicina neotlozhnyh sostoyanij. 2019. Vol. 96. N. 1. P. 7–21. (In Russ.)]. DOI: 10.22141/2224- 0586.1.96.2019.158741.
5. Александрович Ю.С., Барсукова И.М., Богомолов Б.Н. и др. / под ред. Ю.С. Полушина. Основы анестезиологии и реаниматологии. Санкт-Петерург: Эко-Вектор, 2023. 649 с. [Aleksandrovich YU.S., Barsukova I.M., Bogomolov B.N. et al. / pod red. YU.S. Polushina. Osnovy anesteziologii i reanimatologii. Sankt-Peterburg: Eko-Vektor, 2023. 649 p. (In Russ.)].
6. Barbee R.W., Reynolds P. S., Ward K.R. Assessing shock resuscitation strategies by oxygen debt repayment // Shock. 2010. N. 33. P. 113–122. DOI: 10.1097/SHK.0b013e3181b8569d.
7. Meneses E., Boneva D., McKenney M., Elkbuli A. Massive transfusion protocol in adult trauma population // Am. J. Emerg. Med. 2020. Vol. 38. N. 12. P. 2661–2666. DOI: 10.1016/j.ajem.2020.07.041.
8. Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств / под ред. А.Н. Миронова. Москва: Гриф и К, 2012. 944 с. [Rukovodstvo po provedeniyu doklinicheskih issledovanij lekarstvennyh sredstv / pod red. A.N. Mironova. Moskva: Grif i K, 2012. 944 p. (In Russ.)].
9. Баховадинов Б.Б., Барышев Б.А. Кровезаменители. Компоненты крови. Посттрансфузионные реакции и осложнения: справочник для врачей. Санкт-Петербург: Оптима, 2018. 288 с. [Bahovadinov B.B., Baryshev B.A. Krovezameniteli. Komponenty krovi. Posttransfuzionnye reakcii i oslozhneniya: spravochnik dlya vrachej. Sankt-Peterburg: Optima, 2018. 288 p. (In Russ.)].
10. Шперлинг И.А., Крупин А.В., Арокина Н.К., Рогов О.А. Экспериментальная модель острой кровопотери на крысах для скрининговой оценки специфической активности инфузионных растворов // Медицинский академический журнал. 2022. Т. 22. № 4. С. 35–44. [SHperling I.A., Krupin A.V., Arokina N.K., Rogov O.A. Eksperimental’naya model’ ostroj krovopoteri na krysah dlya skriningovoj ocenki specificheskoj aktivnosti infuzionnyh rastvorov // Medicinskij akademicheskij zhurnal. 2022. Vol. 22. N. 4. P. 35–44. (In Russ.)]. DOI: 10.17816/MAJ109574.
11. Корпачева О.В. Влияние боли и кровопотери на реакцию сердечно-сосудистой системы и танатогенез при экспериментальном ушибе сердца // Политравма. 2007. № 4. С. 11–15. [Korpacheva O.V. Vliyanie boli i krovopoteri na reakciyu serdechno-sosudistoj sistemy i tanatogenez pri eksperimental’nom ushibe serdca // Politravma. 2007. N. 4. P. 11–15. (In Russ.)].
12. Колесников А.М., Юдин М.А., Никифоров А.С. и др. Исследование оксиминдуцированной реактивации ацетили бутирилхолинэстеразы человека при угнетении фосфорорганическим инсектицидом in vitro // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2017. Т. 164. № 11. С. 577–581. [Kolesnikov A.M., YUdin M.A., Nikiforov A.S. et al. Issledovanie oksiminducirovannoj reaktivacii acetili butirilholinesterazy cheloveka pri ugnetenii fosfororganicheskim insekticidom in vitro // Byulleten’ eksperimental’noj biologii i mediciny. 2017. Vol. 164. N. 11. P. 577–581. (In Russ.)].
13. Ремизова М.И., Гербут К.А., Гришина Г.В., Кочетыгов Н.И. Регуляция кровообращения селективными ингибиторами синтеза оксида азота при геморрагическом шоке в эксперименте // Медицинский академический журнал. 2010. Т. 10. № 1. С. 57–63. [Remizova M.I., Gerbut K.A., Grishina G.V., Kochetygov N.I. Regulyaciya krovoobrashcheniya selektivnymi ingibitorami sinteza oksida azota pri gemorragicheskom shoke v eksperimente // Medicinskij akademicheskij zhurnal. 2010. Vol. 10. N. 1. P. 57–63. (In Russ.)].
14. Васильев А.Г., Хайцев Н.В., Балашов А.Л. и др. Коррекция показателей системы крови, дыхательной и сердечно-сосудистой систем белых крыс при острой массивной кровопотере сукцинат-содержащими препаратами // Российские биомедицинские исследования. 2019. Т. 4. № 4. С. 17–28. [Vasil’ev A.G., Hajcev N.V., Balashov A.L. et al. Korrekciya pokazatelej sistemy krovi, dyhatel’noj i serdechnososudistoj sistem belyh krys pri ostroj massivnoj krovopotere sukcinat-soderzhashchimi preparatami // Rossijskie biomedicinskie issledovaniya. 2019. Vol. 4. N. 4. P. 17–28. (In Russ.)].
15. Григорьев Е.В., Лебединский К.М., Щеголев А.В. Реанимация и интенсивная терапия при острой массивной кровопотере у взрослых пациентов // Анестезиология и реаниматология. 2020. № 1. С. 5–24. [Grigor’ev E.V., Lebedinskij K.M., Shhegolev A.V. Reanimacija i intensivnaja terapija pri ostroj massivnoj krovopotere u vzroslyh pacientov // Anesteziologija i reanimatologija. 2020. N. 1. P. 5–24. (In Russ.)]. DOI: 10.17116/anaesthesiology20200115.
16. Curcio L., D’Orsi L., Cibella F. et al. A Simple Cardiovascular Model for the Study of Hemorrhagic Shock // Comput. Math. Methods Med. 2020. Vol. 24. P. 7936895. DOI: 10.1155/2020/7936895.
17. Фундаментальная и медицинская физиология / под ред. А.Г. Камкина. Москва: Де Либри, 2019. 392 с. [Fundamental’naya i medicinskaya fiziologiya / pod red. A.G. Kamkina. Moskva: De Libri, 2019. 392 p. (In Russ.)].
18. Любин Н.А., Дежаткина С.В., Ахметова В.В. Физиология животных. Ульяновск: УлГАУ имени П.А. Столыпина, 2020. 179 с. [Lyubin N.A., Dezhatkina S.V., Ahmetova V.V. Fiziologiya zhivotnyh. Ul’yanovsk: UlGAU imeni P.A. Stolypina, 2020. 179 p. (In Russ.)].
19. Изможерова Н.В., Чаркин О.С., Маркова Е.В. и др. Эхокардиография у лабораторных кроликов // Уральский медицинский журнал. 2021. Т. 20. № 6. С. 94–99. [Izmozherova N.V., CHarkin O.S., Markova E.V. et al. Ekhokardiografiya u laboratornyh krolikov // Ural’skij medicinskij zhurnal. 2021. Vol. 20. N. 6. P. 94–99. (In Russ.)]. DOI: 10.52420/2071‑5943‑2021‑20‑6‑94‑99.
Выпуск
Другие статьи выпуска
Цель работы — изучить реабсорбцию белков в почках озерных лягушек (Pelophylax ridibundus) при гиперволемии, дегидратации и действии аргинин-вазотоцина (АВТ), антидиуретического гормона амфибий. Использовали методы иммуногистохимии, конфокальной микроскопии и автоматизированного анализа флуоресцентных сигналов. На фиксированных препаратах почек регистрировали свечение в проксимальных канальцах рецептора эндоцитоза мегалина и введенных белков — лизоцима и зеленого флуоресцентного белка (GFP). Рассчитывали интенсивность сигналов, число флуоресцентных канальцев и эндоцитозных везикул, а также процент колокализации белков с мегалином. Дегидратация и инъекции АВТ приводили, как правило, к снижению показателей реабсорбции. Данные сопоставлены со сходными эффектами гипернатриемии, а также с показателями крови и функции почек, продемонстрированными ранее у лягушек в аналогичных экспериментальных условиях. Можно полагать, что у лягушек увеличение концентрации осмотически активных веществ в крови и первичной моче, а также уменьшение скорости клубочковой фильтрации приводит к снижению захвата и скорости внутриклеточного транспорта белков в клетках проксимальных канальцев.
Интенсивность исследований и применения природного биологически активного вещества муцина улиток в фармакологии и косметологии сегодня позволяет говорить о его масштабной отраслевой потребности в ближайшем будущем. В связи с этим актуальна разработка высокопроизводительных методов получения улиточной слизи, предполагающих многократную экстракцию секрета на протяжении жизни моллюска без причинения вреда его физиологическому состоянию. В работе предложен и исследован способ нетравмирующего воздействия на моллюсков, позволяющий стимулировать секреторную функцию животных и повысить производительность получения муцина. На примере улиток вида Helix pomatia с помощью разработанного и изготовленного опытного образца устройства для получения муцина в лабораторных условиях подтверждена возможность применения пульсирующего светодиодного излучения в видимом диапазоне спектра в качестве нетравмирующего воздействия, повышающего производительность получения секрета. Установлен наиболее эффективный режим светового воздействия. Показана эффективность сочетания пульсирующего светового воздействия с другим нетравмирующим фактором — механическим воздействием текстуры опорной поверхности на ногу моллюска. Приведены фото, иллюстрирующие основные конструктивные и исполнительные узлы (корпус, крышка-шасси, плата контроллера, светодиодный светильник, опорная пластина с ребристой поверхностью) экспериментального устройства для получения муцина.
Для обеспечения комфортного содержания лабораторных яванских макак, которые играют важную роль в доклинических исследованиях, необходимо уделить внимание нескольким ключевым аспектам. Важно обеспечить подходящее для данного вида животных размещение, устанавливать и контролировать оптимальные параметры микроклимата мест содержания, составлять сбалансированный по необходимым нутриентам рацион кормления, подбирать и предоставлять различные виды среды обогащения, а также учитывать особенности репродуктивной системы для успешного воспроизводства животных и получения здорового потомства.
Поиск публикаций выполняли в базах данных PubMed и Google Scholar. В обзор включали публикации, доступные для поиска на 09.07.2024 г. В результате настоящего обзора были обозначены и обобщены данные литературы по лабораторным яванским макакам, которые описывают условия размещения животных; допустимые параметры микроклимата в местах содержания (температура, влажность, кратность воздухообмена, освещенность и цикл освещения); предоставление различных видов обогащения среды; характерное поведение макак в популяции; особенности репродуктивной системы самцов и самок; половое поведение животных в период садки, включая оптимальный период для их спаривания; период беременности и родов; особенности макак в уходе за потомством. При анализе данных литературы были собраны основные рекомендации по содержанию яванских макак с учетом всех зоотехнических потребностей при их размещении и воспроизводстве.
Гематологический анализ, или общий анализ крови, направленный на оценку качественного и количественного состава крови позволяет учитывать широкий спектр показателей. Это один из наиболее простых и часто используемых анализов, позволяющий осуществить мониторинг здоровья лабораторных животных, а также оценивать ход эксперимента. С его помощью можно получить характеристику всех форменных элементов крови: эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов, оценить их процентное соотношение, форму и вид, обнаружить патологические формы клеток, клеток-предшественников или различные включения. Данный вид анализа может указать на ранние изменения состояния здоровья организма, определить такие состояния, как анемия/полицитемия, тромбоцитопения/тромбоцитоз и лейкопения/лейкоцитоз, которые могут быть симптомами какого-либо заболевания или выступать в качестве самостоятельных патологий. Именно поэтому в каждом научном центре необходимо иметь референтные интервалы гематологических показателей крови здоровых лабораторных животных, учитывающие критические преаналитические, аналитические и постаналитические особенности. Целью данной работы являлось установление референтных интервалов гематологических показателей крови как самцов, так и самок мышей, песчанок, хомяков, крыс, морских свинок и кроликов, как широко используемых тест-систем в биомедицинских исследованиях. Возраст всех животных соответствовал диапазону половой зрелости, в исследование были включены самцы и небеременные и нерожавшие самки без учета фазы менструального цикла. Данные, используемые в работе, были получены от интактных животных за временной период январь—июнь 2024 г. в АО «НПО «ДОМ ФАРМАЦИИ». Вся работа была поделена на два этапа: оценка показателей на гематологическом анализаторе и подсчет лейкоцитарной формулы в ходе микроскопического анализа. В цельной крови животных посредством гематологического анализатора регистрировали такие показатели, как общее число эритроцитов, гематокрит, концентрация гемоглобина, средний объем эритроцитов в общем объеме пробы, среднее содержание гемоглобина в эритроците, средняя концентрация гемоглобина в эритроците, общее число тромбоцитов, общее число лейкоцитов, число лимфоцитов и гранулоцитов. При подсчете лейкоцитарной формулы регистрировались такие показатели, как содержание палочкоядерных и сегментоядерных нейтрофилов, эозинофилов, моноцитов, базофилов и лимфоцитов. При сравнении полученных интервалов с референтными значениями из источников литературы было показано, что в целом диапазоны рассматриваемых показателей схожи, но присутствуют и различия. Наибольшие различия были связаны с количеством эритроцитов, тромбоцитов, моноцитов, лимфоцитов, нейтрофилов и концентрацией гемоглобина. Референтные интервалы, рассчитанные в ходе исследования, могут быть полезным инструментом мониторинга состояния здоровья лабораторных животных в ходе проведения доклинических экспериментов.
Мочекаменная болезнь (уролитиаз) характеризуется образованием минерализованных конкрементов в мочевыводящих путях и является одним из самых распространенных заболеваний современного человека. Физико-химические реакции, составляющие основу патогенеза формирования камней, а также роль регулирующих молекул в данном процессе до конца не изучены, что затрудняет разработку эффективных лекарственных препаратов для лечения и профилактики данной патологии и в то же время обусловливает актуальность исследования возможных моделей уролитиаза на лабораторных животных. В данной работе представлены результаты моделирования мочекаменной болезни у самцов крыс и кроликов при помощи введения этиленгликоля (ЭГ) с питьевой водой. ЭГ обладает литогенным действием, поскольку в результате его метаболизма синтезируется большое количество оксалат-ионов, которые, соединяясь с ионами кальция в моче, образуют нерастворимые соли. Возможность формирования патологии исследовали в следующих режимах дозирования индуктора: введение крысам 1% ЭГ в течение 28 дней (n=20) и 1,5% ЭГ в течение 9 дней (n=20); кроликам 1,5% ЭГ в течение 28 дней (n=16) и 4% ЭГ в течение 13 дней (n=16). В рамках данной работы у всех экспериментальных животных регистрировали потребление воды, массу тела, проводили ежедневное клиническое наблюдение, в сыворотке крови оценивали уровень альбумина, общего белка, кальция, фосфора, мочевины, креатинина, аланинаминотрансферазы, аспартатаминотрансферазы, щелочной фосфатазы и лактатдегидрогеназы, в пробах мочи исследовали содержание кристаллов, креатинина, мочевины, белка и кальция. Почки крыс и кроликов подвергались гистологическому исследованию. На основании полученных данных проведена оценка эффективности формирования уролитиаза у крыс и кроликов в исследованных режимах, по результатам которой наиболее удачным признано введение 1% ЭГ крысам в течение 28 дней. При необходимости использовать кроликов в качестве тест-системы следует помнить о слабой выраженности отклонений лабораторных параметров от физиологической нормы.
Одним из актуальных направлений при изучении механизмов развития патологий, возможности тестирования новых фармакологических препаратов, а также внедрении альтернативных способов терапии болезней является использование лабораторных животных, среди которых чаще всего выбираются грызуны. Расстройства аутистического спектра требуют изучения не только генетических и нейробиологических механизмов возникновения, но и возможности ранней диагностики и облегчения симптоматики. Цель представленной работы — провести обзор имеющихся методов создания экспериментальных моделей расстройств аутистического спектра и современных тестов, необходимых для оценки поведенческих паттернов животных при проведении биомедицинских исследований по изучению аутизма. Поиск источников литературы осуществляли в базах данных PubMed и РИНЦ по следующим словарным запросам: «расстройства аутистического спектра», «модели на грызунах», «поведенческие модели», «фармакологические модели расстройств аутистического спектра», «autism», «autism spectrum disorder» и др. Временной горизонт поиска распространялся на 2016–2023 гг. Рассмотрены современные подходы к моделированию расстройств аутистического спектра на грызунах. Отдельное место занимает описание фармакологических и поведенческих моделей. Большое внимание уделяется комплексному изучению поведения животных для оценки степени выраженности симптомов аутизма, а именно нарушений социального поведения, проявлений стереотипного поведения и расстройств коммуникационных способностей.
Катехол-О-метилтрансфераза (KОМТ) является одним из основных ферментов млекопитающих, участвующих в метаболизме катехоламинов, таких как дофамин, норадреналин. Процесс метаболизма катехоламинов важен для регуляции нормального функционирования нервной системы, включая эмоции и реакции на стресс. Участие KОМТ в функционировании нервной системы делает животных с инактивированным геном comt удобной моделью для изучения психических расстройств. С помощью CRISPR/Cas9-технологии была создана новая линия мышей с нокаутом гена comt. Измерение концентрации нейромедиаторов и их метаболитов в стриатуме и префронтальной коре у мышей с нокаутом гена comt и мышей дикого типа проводили методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с использованием внутреннего стандарта 2,3-дигидроксибензойной кислоты, не встречающейся в нативной ткани, в концентрации 100 нг/мл. У гомозиготных мышей с нокаутом гена comt наблюдалось отсутствие гомованилиновой кислоты — конечного продукта метаболизма дофамина в префронтальной коре и стриатуме, в то время как уровень промежуточного продукта 3,4-дигидроксифенилуксусной кислоты был выше. Уровень норадреналина в префронтальной коре оказался выше, тогда как в стриатуме достоверных различий между нокаутными мышами и мышами дикого типа не обнаружено. Несмотря на соответствующие изменения в метаболитах катехоламинов, концентрации серотонина и дофамина значительно не различались между группами мышей с нокаутом гена comt и мышей дикого типа.
Издательство
- Издательство
- НПО ДОМ ФАРМАЦИИ
- Регион
- Россия, Санкт-Петербург
- Почтовый адрес
- 188663, Ленинградская обл, Всеволожский р-н, гп Кузьмоловский, ул Заводская, д 3 к 245, ком 4/34
- Юр. адрес
- 188663, Ленинградская обл, Всеволожский р-н, гп Кузьмоловский, ул Заводская, д 3 к 245, ком 4/34
- ФИО
- Макарова Марина Николаевна (ДИРЕКТОР)
- Контактный телефон
- +7 (___) _______